Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

июля 16, 2014

Стерилизация — уничтожение всех форм патогенных и непатогенных микроорганизмов. Стерилизации подвергаются изделия медицинского назначения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кровью, с диагностическими и лекарственными препаратами, вводимыми парентерально, а также инструментарий, который при контакте со слизистыми оболочками может вызвать их повреждение.

  • Процесс стерилизации проводится поэтапно и включает в себя:
  • — предварительную дезинфекцию;
  • — предстерилизационную очистку;
  • — собственно стерилизацию;
  • — контроль качества стерилизации.
  • Перед предстерилизационной очисткой и стерилизацией дезинфекции подвергаются изделия медицинского назначения, использованные при:
  • — гнойных операциях;
  • — оперативных манипуляциях:
  • — инфекционных больных;
  • — пациентов, являющихся носителями патогенных микроорганизмов и HBs-Ag, перенесших гепатит с неуточненным диагнозом;
  • — пациентов, относящихся к группам риска заболевания СПИДом, гепатитом;
  • — изделия, использованные для введения живых вакцин;
  • — все изделия при наличии эпидемиологических показаний в регионе.
  • Дезинфекция — удаление или уничтожение живых возбудителей инфекционных болезней в (на) абиотических объектах окружающей среды.

Дезинфекция медицинских изделий проводится на месте их использования (в отделениях, кабинетах) с применением физических и химических агентов. Наиболее надежной принято считать физическую дезинфекцию.

Обеззараживание физическими методами представлено в трех вариантах.

1. Кипячение в дистиллированной воде в течение 30 минут или в 2,0% растворе питьевой соды (15 минут) при полном погружении предмета.

2. Обработка водяным насыщенным паром под избыточным давлением (0,5 кгс/см2) при температуре 110°С, время выдержки— 20 минут, осуществляется в паровых стерилизаторах или дезинфекционных камерах.

3. Дезинфекция сухим горячим воздухом при температуре 120°С с экспозицией 45 минут, для чего используются воздушные стерилизаторы (сухожаровые шкафы).

Химическая дезинфекция

Применяются различные химические вещества и их сочетания (дезинфектанты). Основные дезинфицирующие агенты и режимы химической дезинфекции представлены в табл. 2, 3.

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

  1. Примечание: режим дезинфекции дан в трех вариантах:
  2. — при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериальной и вирусной этиологии;
  3. — при туберкулезе;
  4. — при вирусных гепатитах.
  5. Температура дезинфицирующих растворов не менее 18 °С.

Предстерилизационная обработка стоматологического инструментария

Предстерилизационная очистка предназначена для удаления с изделий белковых, механических и лекарственных загрязнений с целью усиления эффекта последующей (см. табл. в разделе «Пропедевтика хирургической стоматологии»).

Очистке подвергается инструментарий после его использования и предварительной дезинфекции. Ее осуществляют ручным или механизированным способом в моющих растворах. Рецептуры моющих растворов представлены в табл. 4.

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

  • Для уменьшения коррозии металлических предметов, обрабатываемых в растворах с перекисью водорода, рекомендуется применять ингибитор коррозии — 0,14% р-р олеата натрия.
  • Процесс очистки включает в себя:
  • — ополаскивание проточной водой по 30 с на предмет;
  • — замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в течение 15 минут, температура раствора 50°С (если используется средство «Биолот» температура 40’С);
  • — мойка каждого изделия в моющем растворе щеткой по 30 с каждый предмет;
  • — ополаскивание в проточной воде 3—5 мин;
  • — ополаскивание в дистиллированной воде 30 с;
  • — сушка горячим воздухом при 85 ‘С до полного исчезновения влаги.

Пользоваться моющим раствором можно до загрязнения, о чем свидетельствует появление его розовой окраски. Раствор, содержащий «Биолот», применяют однократно. Температуру растворов в процессе очистки не поддерживают. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз.

Инструменты с коррозийными пятнами и наличием оксидной пленки очищают химическим способом (не более двух раз в квартал). Для этого используется специальный состав. Уксусная кислота — 5,0 г (по 100% концентрации), хлорид натрия-1,0 г, вода дистиллированная — до 100,0 см3.

В растворе изделия замачивают, а затем промывают проточной водой. Экспозиция для скальпелей из нержавеющей стали — 2 минуты, для инструментов с оксидной пленкой — 3 минуты, при сильном коррозийном поражении — 6 минут с механической очисткой ершом или ватномарлевым тампоном.

Контроль качества предстерилизационной очистки

  1. Качество предстерилизационной очистки определяют путем постановки химических реакций на наличие:
  2. — крови и белковых загрязнений (азопирамовая и амидопириновая пробы);
  3. — остаточных количеств щелочи моющих растворов (фенолфталеиновая проба);
  4. — жира (проба с Суданом III).
  5. Контролю качества очистки подлежит 1% изделий каждого наименования, обработанных в смену.
  6. Азопирамовая проба

Приготовление реактива. 100 г амидопирина и 1,0—1,5 г солянокислого анилина смешивают в сухой посуде, затем заливают 95% этиловым спиртом до 1,0 литра. Смесь тщательно перемешивают. Реактив готов после полного растворения компонентов. Срок хранения раствора в холодильнике в плотно закрытой емкости 2 месяца, при комнатной температуре — не более 1 месяца.

Перед постановкой пробы готовят рабочий раствор. Смешивают равные объемные количества вышеуказанного реактива (азопирам) и 3% раствора перекиси водорода. Проба должна быть поставлена в течение 30-40 минут. В противном случае возможно спонтанное окрашивание реактива.

Амидопириновая проба

Для постановки пробы необходимы: 5% раствор амидопирина (на 95% этиловом спирте), 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода. Последние два реактива готовят на дистиллированной воде. Рабочий раствор получают путем смешивания равных количеств этих растворов.

Фенолфталеиновая проба

Применяют 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Раствор можно использовать в течение месяца, при условии его хранения в холодильнике.

Техника постановки азопирамовой, амидолириновой, фенолфталеиновой проб

Наружные поверхности изделий протирают рабочим раствором реактива или наносят несколько капель. Для контроля очистки шприцев в них вносят 3-4 капли реагента и несколько раз продвигают поршнем. Затем реактив через 30-60 секунд вытесняют на белую марлевую салфетку.

При положительной азопирамовой пробе немедленно или не позднее 1 минуты появляется фиолетовое, затем розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Положительная амидопириновая проба сопровождается сине-фиолетовым окрашиванием реактива. Окрашивание реактивов, наступившее позже 1 минуты, не учитывается.

Фенолфталеиновая проба считается положительной при появлении розового цвета реактива.

Проба с Суданом III

Растворяют 0,2 г измельченной краски судан III и 0,2 г метиленового синего в 70 мл подогретого до 60°С 95% этилового спирта. Затем добавляют 10 мл 20—25% раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды. Приготовленный раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в холодильнике до 6 месяцев.

Реактивом смачивают поверхность изделия, которое могло быть загрязнено жирами. Через 10 секунд краситель обильно смывают водой. Появление пятен, окрашенных в желтый цвет, свидетельствует о жировом загрязнении.

Стерилизация

Стерилизацию проводят паровым, воздушным и химическим методами. Выбор метода зависит от характеристик изделий, подвергающихся стерилизации.

Паровой метод

Действующий агент — водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Стерилизация осуществляется в паровыx стерилизаторах. Применяется один из трех режимов (табл. 5):

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

Рекомендуется для изделий из коррозиестойкого металла, стекла, изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов.

Все изделия, простерилизованные в стерилизационных коробках без фильтров, в двойной мягкой упаковке из бязи или в пергаментной бумаге и прочих разрешенных материалах, считаются стерильными в течение 72 часов. В случаях стерилизации в коробках с фильтрами этот срок увеличивается до 20 суток. По истечении указанных сроков предметы подвергаются повторной стерилизации.

Воздушный метод

Действующий агент — сухой горячий воздух. Используются воздушные стерилизаторы. Стерилизация осуществляется в одном из двух режимов:

1. Первый: температура — 180°С, время выдержки — 60 мин.

2. Второй: температура — 160°С, время выдержки — 150 мин.

Метод рекомендуется для изделии из металла, стекла и силиконовой резины. Изделия, простерилизованные в разрешенном упаковочном материале, могут храниться, в течение 20 суток. Если стерилизация данным методом производилась без упаковки, то стерильный материал должен быть использован сразу после стерилизации.

Химический метод

Используются растворы химических веществ и специальные газы.

Перекись водорода — 6% раствор. Применяется для стерилизации предметов из полимерных материалов, резин, стекла, коррозиестойких металлов. Изделие погружается в раствор на 360 минут при температуре стерилизационного раствора 18°С.

Экспозиция может укорачиваться до 180 минут, если раствор изначально подогреть до 50°С (температура в процессе стерилизации не поддерживается). Готовый раствор перекиси водорода можно хранить в закрытой емкости в темном месте 7 суток.

По истечении этого срока раствор применяется после химического переконтроля на содержание активно действующего вещества.

Дезоксон-1 (1% раствор уксусной кислоты) применяется по той же технологии. Температура раствора должна быть не ниже 18°С, время выдержки — 45 минут. Раствор дезоксона-1 используется только в течение одних суток.

Пары 40% раствора формальдегида в этиловом, спирте. Стерилизацию проводят в микроанаэростатах или в дополнительно оборудованной скороварке «Минутка». Предметы упаковывают двумя слоями полиэтиленовой пленки толщиной 0,06-02 мм, пергамента и другими разрешенными упаковочными мате- риалами.

Режим стерилизации: температура в камере 80°С, количество рабочего раствора — 375,0 мг/дм'!. Время выдержки для изделий из полимерных материалов — 180 минут, для изделий из металла и стекла — 120 минут. Простерилизованный материал в упаковке из полиэтиленовой пленки может храниться 5 лет.

В иной упаковке стерильность сохраняется 20 суток.

Предметы из пластмасс и резин, контактирующих с кровью, подвергаются предварительной дегазации (48 часов при комнатной температуре).

Смесь ОБ (окись этилена с бромистым метилом 1:2,5 по весу) и окись этилена — газообразные вещества. Применяемое оборудование— микроанаэростат, специально оборудованная скороварка «Минутка».

Стерилизуют предметы в упаковке из двух слоев (двойные пакеты из рекомендованных материалов). Стерилизация проводится при температуре 18°С, 35°С и 55°С.

Срок хранения изделий после стерилизации в полиэтиленовой пленке — 5 лет, в иной упаковке до 20 суток.

Простерилизованные предметы применяются после обязательной дегазации (газы токсичны для человека и животных; в вентилируемом помещении. Точные сроки дегазации указаны в ТУ (технические условия) для конкретных изделий.

Наибольшие трудности возникают при дезинфекции наконечников.

Согласно инструкции Главного СЭУ Министерства здравоохранения РФ дезинфекция стоматологических наконечников проводится путем тщательного двукратного протирания наружных частей и канала для бора стерильным ватно-марлевым тампоном, смоченным 1 % р-ром хлорамина, 2 % р-ром лизоформина. Интервал между протираниями 15 минут. Для стерилизации наконечников используют масляные стерилизаторы.

Контроль качества стерилизации

Контроль качества стерилизации осуществляется физическим, химическими и бактериологическими методами. Физический и химический методы используются в оперативном контроле технологического цикла стерилизации, т. е. результаты учитываются в процессе стерилизации или сразу после ее окончания.

Физический метод

Метод предполагает измерение температуры, давления и времени.

Контроль температурного режима проводится с помощью максимальных термометров. Диапазон измерения от 0 до 150°С для паровых стерилизаторов, от 0 до 200°С для воздушных стерилизаторов. Упакованные термометры размещают в контрольные точки. По окончании цикла стерилизации регистрируются показания термометров, которые сопоставляются с регламентированной температурой.

Хронометраж стерилизации проводят с помощью механического секундомера или наручных механических часов.

Давление в паровом стерилизаторе измеряют мановакуум метром. Диапазон измерения 1-5 кгс/см2.

Обнаружение неудовлетворительных результатов показывает на возможные нарушения: режима стерилизации, правильности загрузки или исправности аппарата.

Химический метод

Химический контроль проводят с помощью химических тестов и термических индикаторов. Используются химические вещества, иногда в смеси с органическим красителем, изменяющие свое агрегатное состояние и цвет при определенной температуре.

Упакованные химические тесты нумеруют и размещают в паровые и воздушные стерилизаторы. Обычно индикаторные соединения запаивают в стеклянные трубочки. При равномерном расплавлении и изменении цвета теста результат считается удовлетворительным.

  • Для контроля работы паровых стерилизаторов применяются вещества, температура плавления которых соответствует температурному режиму работы данного аппарата:
  • — Амидопирин (белый кристаллический порошок или кристаллы без запаха), интервал температуры плавления 104— 107°С.
  • — Антипирин (белый кристаллический порошок или бесцветные кристаллы без запаха), 108—111°С.
  • — Резорцин (белый или со слабым желтоватым оттенком кристаллический порошок со слабым запахом), 105—110°.
  • — Бензойная кислота (бесцветные игольчатые кристаллы или белый кристаллический порошок), 114—120°С.
  • — Д(+)-Манноза (бесцветные кристаллы в виде ромбических призм), 127—131 °С.
  • — Никотинамид (белый мелкокристаллический порошок со слабым запахом), 125—131 °С.
  • Контроль температурного режима работы воздушных стерилизаторов осуществляется тестами с другими химическими веществами:
  • — Левомицетин (белый или с желтовато-зеленоватым оттенком кристаллический порошок), интервал температуры плавления 141- 146°С.
  • — Винная кислота (бесцветные кристаллы), 168—169°С.
  • — Гидрохинон (бесцветные или светло-серые серебристые кристаллы), 164—170°С.
  • — Тиомочевина (блестящие кристаллы), 165—171°С.
Читайте также:  Травы от высокого давления: обзор лучших растений при гипертонии

Обнаружение не оплавленного теста указывает на несоблюдение температурных параметров режима стерилизации. Стерилизацию повторяют с закладкой новых химических тестов. При повторном неудовлетворительном результате прекращают использовать стерилизатор. Проводят тщательную проверку его состояния с контролем измерительной аппаратуры.

Бактериологический метод

Метод предназначен для контроля работы стерилизаторов с помощью биотестов. Биотесты представляют собой споры бактериальных культур, помещенных в стеклянные трубки или чашечки из алюминиевой фольги.

Используют тест-культуры ВКМ В-718 и штамм С. Биотесты готовят бактериологические лаборатории в соответствии с официальной методикой. В случаях неудовлетворительного результата (рост культур) проводится анализ параметров стерилизационного цикла.

  1. Дополнительно может применяться  контроль на стерильность смывов с простерилизованного инструментария.
  2. Наиболее частые причины негативных результатов контроля стерилизации:
  3. — неисправность аппаратуры и контрольно-измерительных приборов;
  4. — неполное удаление воздуха из рабочей камеры парового стерилизатора;
  5. — перегрузка и неправильная загрузка стерилизационной камеры;
  6. — несоблюдение параметров стерилизации;
  7. — использование нерегламентированного упаковочного материала;
  8. — нарушение режима вентиляции парового стерилизатора;
  9. — использование в химической стерилизации веществ после длительного хранения без контроля на содержание активно действующего начала. 

Асептика и антисептика в стоматологической практике. Часть I

Персонал стоматологических клиник постоянно подвергается риску инфицирования высоковирулентными вирусами, бактериями и грибками.

Даже нормофлора ротовой полости здорового человека может представлять опасность для персонала клиники со сниженным иммунитетом, не говоря уже о высокопатогенных микроорганизмах больного со стоматитом, ВИЧ, туберкулёзом и другими распространёнными заболеваниями.

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

Учитывая эпидемиологическую ситуацию, можно утверждать, что большая часть из пациентов, являющимися носителями контагиозных заболеваний, сами не знают об их наличии. Кроме того – многие из тех, кто знает о своём недуге, никогда не сообщают об имеющейся инфекции персоналу лечебного учреждения.

С другой стороны – и сотрудники клиник нередко являются источником заражения, особенно, когда речь идёт о бессимптомном носительстве или компенсированном хроническом заболевании.

Основные пути распространения внутрибольничной инфекции (ВБИ)

  • Прямой контактный путь передачи осуществляется при прямом контакте с инфекционным агентом: во время операции через руки, инструментарий, одежду пациента или сотрудника.
  • Опосредованно инфекция передаётся через полотенца, вентили сантехники, дверные ручки и т.п..
  • Имплантационный путь, как правило, связан с нарушением стерильности шовных материалов, остающихся в ране инородных тел.
  • Воздушно-капельный путь инфицирования осуществляется при взаимодействии с носителем респираторного заболевания.
  • Пылевой путь заражения. Основную роль играют патогенные микроорганизмы, находящиеся в пылевых частицах (туберкулёзная палочка, стафилококк).

Последствия ВБИ могут быть достаточно серьезными – от осложнений после манипуляции у нескольких пациентов, до инфицирования персонала ВИЧ илигепатитом, закрытия клиники и продолжительных судебных процессов.

 

Oсновные принципы профилактики ВБИ

Асептика – система мероприятий, направленных на предупреждение инфицирования раны, полости или участка ткани пациента при осуществлении диагностических и лечебных манипуляций. Включает в себя дезинфекцию и стерилизацию.

  • Дезинфекция – комплекс мер по уничтожению инфекционных агентов во внешней среде, т.е. на всей территории клиники.
  • Стерилизация – полная ликвидация патогенных микроорганизмов, включая споры (цисты).

Антисептика – процесс обработки инфицированных участков тела пациента, в ходе которого возбудитель должен быть уничтожен.

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

Для предупреждения инфицирования пациентов и персонала, необходимо придерживаться правил асептики, дезинфекции и антисептики, принятых для стоматологических клиник… Читайте подробную инструкцию в нашей следующей статье!

Читать дальше

Асептика и антисептика в стоматологии, стерилизация и дезинфекция: принципы обработки и отличия

Обеззараживание инструментов в стоматологии нужно для предотвращения инфицирования пациентов при проведении лечебных манипуляций.

Сегодня существует два способа очистки приспособлений от патогенных микроорганизмов – химический и термический.

Каждый из них используется для определенного типа инструментов и позволяет максимально обезопасить человека от инфицирования раны или заражения опасными болезнями.

Виды стоматологических инструментов, которые подлежат обработке

Обработку проходят инструменты, которые при стоматологических манипуляциях контактируют со слюной или кровью пациента. При подготовке приборов для работы специалиста обеззараживанию подвергаются:

  • комплекты для осмотра – зеркало, зонд, пинцет и лоток;
  • приспособления, применяемые в процессе лечения зубов, – экскаватор, гладилки, насадки для бормашины, приборы для работы в каналах корней, штрипсы, полоски для подтачивания пломб;
  • пародонтологический инструментарий – кюреты, насадки для скейлеров;
  • инструменты, применяемые в ортопедии, – боры для препарирования единиц и снятия коронок, ложки для слепков, микрометры, шпатели;
  • хирургические приспособления – шприцы для карпульных обезболивающих средств, щипцы для экстракции зубов, скальпели, элеваторы, иглодержатели и т. д.;
  • посуда – колбы, мензурки и другие емкости, применяемые в условиях лаборатории.

Обеззараживанию также подвергаются любые резиновые изделия и материалы для перевязок. Поверхность, используемая для раскладывания рабочих инструментов, также нуждается в тщательной обработке.

Асептика и антисептика и их отличия

Люди, не имеющие медицинского образования, часто путают понятия асептики и антисептики, хотя они имеют совсем разные значения. Асептика – это комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания патогенных микроорганизмов в раны при перевязках, операциях и других манипуляциях.

Антисептикой называют комплекс мероприятий, которые направлены на уничтожение микробов в ране или организме. К таким мерам обеззараживания относят механическую чистку от гноя, очагов некроза, дренирование, использование ультрафиолетового облучения и лазера, применение антибиотиков и т. д.

ЧИТАЕМ ТАКЖЕ: как осуществляется механическая чистка зубов в стоматологии?

Дезинфекция и ее разновидности

Целью дезинфекции является уничтожение болезнетворных и условно-патогенных бактерий, вирусов, грибов и их спор (возможно сохранение некоторых спор после процедуры). Обеззараживание инструментов проводится сразу после их эксплуатации.

Ротационные инструменты погружают в дезинфицирующий раствор, толщина которого над приборами составляет минимум 1 см. Дезрастворы готовят из концентрированной химической жидкости и воды. В работе используют Деколекс, Вентолен, ИД-22 и др.

Обработка приборов осуществляется на протяжении часа.

Принципы дезинфицирования отличаются в зависимости от инвентаря. Существует три уровня дезинфекции:

  • Низкий. Для процедуры используются вещества на основе спирта, фенола или хлора. Они позволяют обеззаразить инструменты, находившиеся в контакте с неповрежденной кожей. Грибок и бактерии эти вещества не удаляют.
  • Высокий. Для работы применяется смесь 6-процентной перекиси водорода, альдегида и хлора, а также препараты надуксусной кислоты. Ими обрабатываются инструменты, контактирующие с кровью и применяемые для создания инъекционных растворов. Вещества отлично справляются с большинством видов болезнетворных бактерий.
  • Промежуточный. Дезинфицирующая процедура позволяет удалить крупные липидные бактерии и вирусы. Этого достаточно для обеззараживания инструментов, находившихся в контакте со слизистыми оболочками или использовавшихся при работе с рваными ранами.

Для чего необходима стерилизация, как она проводится?

Целью стерилизации является полное уничтожение патогенных микроорганизмов, в том числе и спор грибов, на инвентаре. Процедуре подвергается весь инструментарий, соприкасающийся с областью раны, слизистой оболочкой или кровью.

Метод обеззараживания Материал приспособлений Время обработки Алгоритм процедуры
Сухой жар с применением сухожарового шкафа Металл и стекло 1 час при температуре 180°С, 2,5 часа при 160°С. Инструменты используют сразу или накрывают стерильной салфеткой на время до 12 часов. Прибор включают после загрузки всех объектов. При температуре 90°С двери шкафа закрывают, после процедуры дают ему остыть до 90°С и вынимают приспособления.
Паровой метод с использованием автоклава Стекло, металл, текстиль 20 минут при 132°С Приборы загружают в аппарат, который включается и воздействует на инструменты горячим паром под давлением. После процедуры их охлаждают и сушат.
Латекс, резина 45 минут при 120°С
Химическая, или холодная стерилизация с применением жидкостей Для изделий, не предназначенных для термообработки Бианол 20% – 10 часов, Дезоксон-1 – 45 минут, глутаровый альдегид 2,5% – 6 часов Объекты помещают в емкости с раствором, выдерживают, вынимают пинцетом и переносят в 3 сосуда с дистиллированной водой, где моют 5–15 минут. Высушенные инструменты хранятся в стерильном биксе до 3 суток.

Существуют и современные методы обрабатывания приспособлений, например стерилизационное устройство швейцарской компании ЕMS «Терминатор». Оно осуществляет чистку, мойку и обеззараживание всего за несколько минут.

Стерилизация в стоматологии: асептика и антисептика, дезинфекция и принципы обработки инструментария

Асептика

Рис.2.3.Положение врача при работе с пациентом(а) и в со­ответствии с циферблатомча­сов(8-12) (б).

Рис.2.4. Неправильноеположение врача у кресла больного прира­ботесидя (а) и стоя (б).

20

Рис.2.5.Защитные очки, маска и перчатки.

работепозволяет повы­ситьпроизводительность труда, предупредитьвоз­никновениепрофессио­нальныхзаболеваний и способствуетпрофессио­нальномудолголетию.

2.4.Асептика и антисептика в стоматологии

Асептикасистемапрофилактических, мероприятий,на­правленныхна предупреждение попадания микроорганизмовврану, органы и ткани больного в процесселюбых врачебных мероприятий.

Асептикавключает стерилизацию инструментов,приборов и пр.,специальную обработку рук хирурга,соблюдение особых приемовво время лечебных процедур, осуществлениеспеци­альныхгигиенических и организационныхмероприятий.

Выделяют5 способов инфицирования раневойповерхности: воздушный,капельный, контактный, имплантационный,сме­шанный.

Антисептика— система мероприятий, направленныхна умень­шениеколичества микроорганизмов в операционномполе, ране.

Впервыепонятие ‘антисептика’ было введеноанглийским военнымхирургом Рпп§1 в 1750 г. Современную историюан­тисептики связывают с именамивенского акушера И.Зиммель-вейса и'английского хирурга Дж. Листера.Известно, что мето­дыборьбы с заражением, нагноением ран игнилостным про­цессомв них существовали и до введения этогопонятия.

Методы антисептики:

  1. механический (удаление микроорганизмов путем иссече­ния инфицированных краев раны; промывание);

  2. физический (высушивание ран гигроскопическим пере­вязочным материалом, наложение повязок с гипертоническимраствором, дренирование полостей, аспирация содержимогораны, облучение ультрафиолетовым светом);

  3. биологический (использование антибиотиков, бактерио­фагов, вакцин и сывороток).

  • Важнымэлементом асептики является стерилизация.Стери­лизация— совокупность физических и химическихспособов
  • 21

полногоосвобождения объектов внешней среды(инструменты, перевязочныйматериал и др.) от микроорганизмов и ихспор. Стерилизацииподвергают все изделия, соприкасающиесяс ране­войповерхностью, кровью, инъецируемымипрепаратами и т.д.

Различаютвиды стерилизации с помощью физическихи хи­мическихфакторов.

Физические факторы — высокиетемпера­туры(кипячение, сухожаровая стерилизация,автоклавирова-ние— действие пара под давлением),ультразвуковое, ультра­фиолетовоеизлучение (рис. 2.6; 2.

7), химические факторы— этоиспользование химических веществ(формалин, 1—3 рас­твор хлорамина, 6 %раствор перекиси водорода, тройнойрас­твор, 70 % спирт и т.д.). Этот видстерилизации называют ‘хо­лоднойстерилизацией’.

Процесс стерилизациивключает несколько этапов.

1.Дезинфекция.Дезинфекциейназывают совокупность ме­роприятийпо полному или частичному уничтожениюмикро­организмовс объектов внешней среды (инструментов,перевя­зочногоматериала и др.), раневой поверхностиили операцион­ногополя, рук врача и медицинского персонала.

Дезинфекцияинструментов, стаканов, стеклянныхплато и др.проводится путем замачивания в растворахсильнодейст­вующихантисептиков.

Использованныйперевязочный материал, перчатки и др.пе­ред утилизацией дезинфицируют в5 % растворе аламинола в течение60 мин, при наличии на них крови используют8 % рас­твораламинола. Для дезинфекции кожиоперационного поля применяют70 % спирт, 2 % раствор йода и др., которымиее последовательнообрабатывают.

Важноезначение имеет обработка рукврача-стоматолога. Существуетнесколько методов обработки рук врачаперед про­ведением хирургическихманипуляций, при этом используютсяразличныеантисептические препараты (йод,хлоргексидин, ‘Лизанин’).

После хирургической дезинфекции рук(мытье рую с последующей обработкой 0,5% спиртовым раствором хлор-гексидинаи др. в течение 2—3 мин) с целью асептическогопро­веденияоперации необходимо использованиестерильных ре­зиновых перчаток.

2.Предстерилизационнаяочистка. Такуюочистку произво­дят,как правило, ручным способом при комнатнойтемпературе(последезинфекции). Медицинские инструментысначала про­мываютв проточной воде в течение 2—3 мин, азатем замачи­ваютв дистиллированной воде на 10—15 мин.

Читайте также:  Флюс зубной: как быстро снять опухоль и отек, какие таблетки принять?

Разъемные изде­лияпогружают в раствор в разобранном виде.При наличии зам­ковыхчастей инструменты замачивают раскрытыми.Для до­полнительной предстерилизационной очистки мелкихинструментовот механических загрязнений можноиспользо­ватьспециальный ультразвуковой аппарат(‘Серьга’ и др.).

По­слезамачивания проводят азопирамовуюпробу для выявления

22

Рис. 2.6. Сухожаровойстерилизатор.

Рис. 2.7. Автоклав.

23

Рис. 2.8. Аппарат ‘Аз81811па’ для предстери-лизационной обработки стоматологических нако­нечников.

‘скрытой’ крови. Проба расценивается как по­ложительная, если через 1 мин после контакта реактива с загрязнен­ным участком появляет­ся фиолетовое окраши­вание, быстро переходя­щее в розово-сиреневое

или буроватое. После предстерилизационной очистки инстру­менты тщательно высушивают.

Стоматологические наконечники требуют особого ухода из-за сложности устройства. Дезинфекцию, предстерилизацион-ную очистку и смазывание наконечников можно производить в аппарате ‘А8§1§1ша’: дезинфицирующий раствор и масло для смазки поступают под давлением в фиксированный в приборе наконечник (рис. 2.8).

В современной стоматологической практике используется аппарат ‘Терминатор’, позволяющий за 3 с провести дезинфек­цию и очистку наконечника.

  1. Размещение инструментов в стерилизаторе. При стерили­зации в сухожаровом шкафу стоматологические инструменты влотках располагают ‘колодезным’ методом. При автоклавирова-нии перевязочного материала его предварительно помещают вспециальные биксы.

  2. Собственно стерилизация. Такая стерилизация проводит­ся в сухожаровом шкафу, автоклаве, стерилизаторах для кипя­чения инструментов, глассперленовом стерилизаторе (рис. 2.9).

    Последний используют для стерилизации мелких стоматоло­гических инструментов (боры, эндодонтические инструментыи др.). При химической стерилизации инструменты (зеркала идр.

    ) погружают в специальные емкости с растворами сильно­действующих антисептиков.

В современных условиях для стерилизации инструментов чаще используют сухожаровые шкафы, при этом соблюдается определенный режим: температура 180 °С, время 60 мин. Сте­рильность контролируется специальной индикаторной лен­той, помещенной в 5 точках сухожарового шкафа. Стомато­логические наконечники стерилизуют в специальных авто­клавах.

Рис. 2.9. Глассперлено-вый стерилизатор.

Хранение стерильных инструментов и материала.

I

Инструменты хранят на стерильном столе под сте­рильной простыней. Если надо достать инструмен­ты, простыню поднима­ют специальными дер­жателями (корнцанги). Для хранения стериль­ных инструментов мож­но использовать специ­альную ультрафиолето­вую полку (рис. 2.10).

Применяются также аппараты для ламинирования инструмен­тов после стерилизации в специальные пакеты.

Стерильный перевязочный материал хранят в металличе­ских биксах с указанием даты проведения стерилизации на прикрепленной этикетке.

'••• (4 . .„,. _ ‘ . „„ ) ._.,„,„ „ „и ,

Важное значение для профилактики инфицирования ме­дицинского персонала и пациентов имеет дезинфекция слеп­ков, моделей.

Слепки, которые могут являться депо для па­тогенной микрофлоры,надо промывать про­точной водой, затем об­рабатывать 2 % раство­ром глутаральдегида илидругими антисептиче­скими средствами.

В на­стоящее время для де­зинфекции слепков су­ществует специальныйприбор ‘Хигоджет’. Длядезинфекции рук, инст­рументов, наконечни­ков, протезов и др. при­меняется универсаль­ный прибор ‘Небуцид’. |

Рис. 2.10. Ультрафиолетовая полка для хранения сте­рильных инструментов.

24

25

Особоевнимание обращается на профилактикугепатита и ВИЧ-инфекции.При проведении стоматологическихвмеша­тельств, особенно манипуляцийс режущими, колющими ин­струментами(иглы, скальпели, боры, сепарационныедиски дляпрепарирования зубов и др.), необходимособлюдать осо­бые меры предосторожности.

Медицинский работник должен относитьсяк крови, слюне и другим биологическимжидко­стяморганизма как к потенциально заразномуматериалу. Пе­ред работой необходимонадевать защитные очки или пласти­ковыещиты, защитную маску для лица, одноразовыеперчат­ки.

После осмотра больного -или после каждойпроцедуры, приработе с инфицированным материаломнеобходимо тща­тельно мыть руки.

Вслучае опасности заражения ВИЧ-инфекциеймедицин­скийперсонал должен проводить все манипуляциив двойных перчатках. Повторно перчаткине используют. В процессе ра­ботыперчатки обрабатывают 70 % спиртом илидругими анти­септическимисредствами.

Припроколе перчаток и повреждении кожногопокрова не­обходимообработать перчатки дезинфицирующимираствора­ми, затем снять их, выдавитькровь из ранки, вымыть руки под проточнойводой с мылом, обработать кожу рук 70 %спиртом исмазать ранку 5 % настойкой йода.

Загрязненные кровью ру­кинемедленно обрабатывают в течение 30 стампоном, смочен­ным кожным антисептиком(70 % спирт, 3 % раствор хлорами­на,актинидерм, актинисепт, хлоргексидин).

После этого руки дваждымоют теплой проточной водой с мылом,вытирают на­сухо индивидуальнымполотенцем.

Припопадании крови и других биологическихжидкостей наслизистую оболочку глаз необходимопромыть глаза во­дойили 1 % раствором борной кислоты. Есликровь попала наслизистую оболочку носа, следует закапатьв нос 1 % рас­творпротаргола.

При контакте крови илидругих биологиче­скихжидкостей со слизистой оболочкой ртанужно пропо­лоскатьрот 70 % спиртом, или 0,005 % растворомперманга-натакалия, или 1 % раствором борной кислоты.

В случае нарушенияцелостности кожных покровов (раны,царапины, мокнущие дерматиты) медицинскогоработника отстраняют отработы.

Рискраспространения инфекции значительноуменьшается, еслиперед лечением пациент прополаскиваетполость рта. Так, полоскание тольководой сокращает количество микроорганиз­мовв аэрозолях на 75 %, а применение специальныхполоска­нийдля полости рта — на 98 %.

Замедицинским работником, получившимтравму при ока­заниистоматологической помощи ВИЧ-инфицированномупа­циенту,устанавливают наблюдение в течение 12мес с исследо-

26

ванием крови через3, 6 и 12 мес в СПИД-центре. Сразу послетравмы необходимо провести профилактикуВИЧ-инфекции с помощью специальныхантиретровирусных средств.

Длясанитарно-гигиенической обработкистоматологическо­го кабинета, кромеежедневной уборки помещения, припрове­дении терапевтического,ортопедического приема необходимагенеральнаяуборка 1 раз в месяц с использованиемдезинфици­рующихсредств: 1 % раствора хлорамина или 0,05 %раствора септодора.В хирургическом кабинете генеральнаяуборка долж­напроводиться чаще — 1 раз в неделю.

Асептика и антисептика в стоматологии

Асептика – система профилактических мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, органы и ткани больного в процессе любых врачебных мероприятий.

Асептика включает стерилизацию инструментов, приборов и пр., специальную обработку рук хирурга, соблюдение особых приемов во время лечебных процедур, осуществление специальных гигиенических и организационных мероприятий.

Антисептика – система мероприятий, направленных на уменьшение количества микроорганизмов в операционном поле, ране.

Важным элементом асептики является стерилизация. Стерилизация – это совокупность физических и химических способов полного освобождения объектов внешней среды (инструменты, перевязочный материал и др.) от микроорганизмов и их спор. Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кровью, инъецируемыми препаратами и т. д.

  • Процесс стерилизации включает несколько этапов:
  • – дезинфекция;
  • – предстерилизационная очистка;
  • – собственно стерилизация;
  • – хранение стерильных инструментов и материала.
  • Дезинфекция инструментов

Все изделия после их применения подлежат дезинфекции. Дезинфекцию проводят с целью уничтожения патогенных и условно патогенных микроорганизмов: вирусов (в т.ч.

вирусов гепатитов и ВИЧ-инфекции), бактерий (включая микобактерии tbc ), грибов на изделиях медицинского назначения. По возможности следует дезинфицировать инструменты сразу после их использования.

Дезинфекцию изделий медицинского назначения осуществляют физическим и химическим способом.

Выбор метода дезинфекции зависит от особенностей изделий и его назначения. Изделия медицинского назначения, применяемые в стоматологии, отличаются разнообразием по назначению и поэтому требуют тщательного выбора метода и средства дезинфекции.

Наиболее часто используют влажный химический способ дезинфекции, известный как замачивание инструментов.

Дезинфекцию с использованием химических средств проводят способом погружения изделий в раствор в специальных емкостях из стекла, пластмасс или покрытых эмалью без повреждений.

Для дезинфекции стоматологических инструментов рекомендуются средства на основе альдегидов, спиртов, катионных ПАВ, содержащих, кроме действующих веществ, ингибиторы коррозии и другие компоненты; хлорсодержащие средства; средства на основе перекиси водорода. Более щадящие по отношению к материалам, из которых изготавливаются медицинские изделия, альдегидсодержащие средства: Глутарал (Россия), Аламинол (Россия), Сайдекс (Джонсон энд Джонсон (США), Лизоформин 3000 (Германия) и др.

Боры, эндодонтические инструменты дезинфицируют в средствах, объединяющих дезинфекционную и предстерилизационную очистку, такие как «Гротонат» (Ф. Шюльке и Майр-Мотек); Deconex Dental BB (Ф. Borer chemie AG, Швейцария).

Для изделий и их частей, не соприкасающихся непосредственно с пациентом, может быть использован способ двукратного протирания салфеткой из марли, смоченной в растворе дезинфицирующего средства.

  1. При дезинфекции ручных инструментов необходимо строго соблюдать ряд правил:
  2. – использовать для обработки инструментов только специально
  3. предназначенные для этого растворы. Не использовать растворы,
  4. содержащие сильные окислители (например, хлор), вызывающие
  5. коррозию инструментов;
  6. – строго соблюдать необходимую концентрацию дезинфицирующих
  7. растворов и время их контакта с инструментами (в обязательном
  8. порядке нужно ознакомиться с инструкцией изготовителя);
  9. – нахождение инструментов в растворе сверх положенного времени
  10. может привести их к коррозии.

После каждого лечения использованный инструмент сначала сортируется: расходные материалы помещают в корзину для мусора. Инструменты, не подлежащие химической дезинфекции, а также мелкий инструментарий (боры, эндодонтический инструментарий и пр.

) укладываются в отдельные емкости, а остальные в контейнер: при дезинфекции использованных инструментов применяются специальные контейнеры, обычно пластмассовые, в которых находится съемная кассета.

Оптимальным является использование специальных кассет, в которых инструменты надежно фиксированы.

После дезинфекции инструменты должны быть тщательно промыты, поскольку даже минимальные следы дезинфицирующего раствора могут привести к коррозии во время стерилизации.

Для промывания лучше использовать деминерализованную воду, что позволяет избежать появления водных разводов и налета на инструментах; кроме того, хлор, содержащийся в проточной воде, может привести к коррозии инструментов.

Асептика и антисептика. Методы дезинфекции и стерилизации. — презентация

1 Асептика и антисептика. Методы дезинфекции и стерилизации

2 Дезинфекция Дезинфекция это комплекс мероприятий, направленных на уничтожение возбудителей инфекционных заболеваний и разрушение токсинов на объектах внешней среды. Для её проведения обычно используются химические вещества.

3 Дезинфекция уменьшает количество микроорганизмов до приемлемого уровня, но полностью может их и не уничтожить. Является одним из видов обеззараживания.

Различают профилактическую и очаговую (текущую и заключительную) дезинфекцию: профилактическая проводится постоянно, независимо от эпидемической обстановки: мытьё рук, окружающих предметов с использованием моющих и чистящих средств, содержащих бактерицидные добавки.

текущая проводится у постели больного, в изоляторах медицинских пунктов, лечебных учреждениях с целью предупреждения распространения инфекционных заболеваний за пределы очага. заключительная проводится после изоляции, госпитализации, выздоровления или смерти больного с целью освобождения эпидемического очага от возбудителей, рассеянных больным.

4 Виды дезинфекции ДЕЗИНФЕКЦИЯ Профилактическая Очаговая Соматическое отделение стационара Амбулаторное лечебное учреждение Текущая Заключительная Производится многократно до госпитализации в домашних условиях и ЛПУ Тарелки, ложки, дверные ручки, туалет, палата Производится однократно

5 Методы дезинфекции Механический предусматривает механическое удаление микроорганизмов (удаление пыли, стирка, влажная уборка и т.д.) Физический обработка лампами, излучающими ультрафиолет, кипячение, воздействие низкими температурами.

6 Химический (основной способ) заключается в уничтожении болезнетворных микроорганизмов и разрушении токсинов дезинфицирующими веществами. Комбинированный основан на сочетании нескольких из перечисленных методов(например, влажная уборка с последующим ультрафиолетовым облучением)

7 Дезинфектанты — противомикробные вещества, используемые в целях дезинфекции. ДС, представленные на отечественном рынке, выпускаются в различных формах (жидких, твердых, спреи), что делает их более удобными в применении.

Поскольку вода является наилучшей средой для контакта бактерицида с микробной клеткой, в качестве дезинфектантов используют препараты, хорошо растворимые в воде; порошки и таблетки для дезинфекции применяют лишь после перевода их в растворимое состояние.

8 Для применения в медицине рекомендуются преимущественно жидкие концентраты и готовые растворы ДС.

9 Химические средства дезинфекции 7 КЛАССОВ Г аллоидосодержащие 1) Хлорсодержащие; 2) Органические хлорсодержащие соединения; 3) На основе брома; 4) На основе изоциануратов. К ислородсодержащие Поверхностно -активные вещества (ПАВы) Гуанидины Альдегидсодержащие Спирты Фенолсодержащие

10 Во время проведения профилактических мероприятий необходимо также пользоваться антимикробными препаратами, которые влияют на аэробную и анаэробную микрофлору. Одним из самых универсальных антисептических средств, считается хлоргексидин. Он сегодня входит в состав множества лечебно- профилактических средств.

  • 11 Этот антисептик может вызвать выраженное действие на: грамотрицательные и грамположительные бактерии; факультативные анаэробы и аэробы; грибы; вирусы герпеса.
  • 12 Способы использования дезинфектантов ПОГРУЖЕНИЕ; ЗАСЫПАНИЕ; ПРОТИРАНИЕ.
  • 13

14 Асептика Асептика комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микробов в рану. Одним из основателей асептики считается немецкий хирург Эрнст фон Бергманн. Он предложил физические методики обеззараживания кипячение, обжигание, автоклавирование. Это произошло на X конгрессе хирургов в Берлине. Помимо их существует химический способ и механический.

Читайте также:  Препарирование под виниры - общие принципы процедуры

15 Антисептика Антисептика система мероприятий, направленных на уничтожение микроорганизмов в ране, патологическом очаге, органах и тканях, а также в организме больного в целом, использующая механические и физические методы воздействия, активные химические вещества и биологические факторы.

16 Термин был введён в 1750 году английским хирургом Дж. Принглом, описавшем антисептическое действие хинина. Внедрение асептики и антисептики в хирургическую практику (наряду с обезболиванием и открытием групп крови) относится к одним из фундаментальных достижений медицины XIX века.

17 До появления антисептики хирурги практически никогда не шли на риск операций, связанных со вскрытием полостей человеческого тела, так как вмешательства в них сопровождались почти стопроцентной летальностью от хирургических инфекций. Профессор Эрикоен, учитель Листера, в 1874 году заявлял, что брюшная и грудная полости, а также полость черепа, навсегда останутся недоступными для хирургов.

18 Стерилизация Стерилизация полное освобождение какого- либо предмета от всех видов микроорганизмов, включая бактерии и их споры, грибы, вирионы находящихся на поверхностях, оборудовании, в пищевых продуктах и лекарствах. Осуществляется термическим, химическим, радиационным, фильтрационным методами.

19 Методы стерилизации Термическая: паровая и воздушная (сухожаровая) Химическая: газовая или химическими растворами (стерилянтами) Плазменная (плазмой перекиси водорода) Радиационная стерилизация применяется в промышленном варианте Метод мембранных фильтров применяется для получения небольшого количества стерильных растворов, качество которых может резко ухудшиться при действии других методов стерилизации(бактериофаг, селективные питательные среды, антибиотики)

20 Методы стерилизации, разрешенные для применения в ЛПУ.

Тип метода МетодСтерилизующий агент Физический (термический) Паровой Водяной насыщенный пар под избыточным давлением Воздушный Сухой горячий воздух Инфракрасный Инфракрасное излучение Гласперленовый Среда нагретых стеклянных шариков Химический Газовый Окись этилена или ее смесь с другими компонентами Плазменный Пары перекиси водорода в сочетании с их низкотемпературной плазмой Жидкостный Растворы химических средств (альдегид-, кислород- и хлорсодержащие)

21 Термическая стерилизация Обжигание и кипячение Обжигание в настоящее время для стерилизации инструментов не используется. Метод можно применять в домашних условиях при невозможности использования других. Обжигание металлических инструментов проводится открытым пламенем.

Обычно на металлический поднос кладут инструмент, наливают небольшое количество этилового спирта и поджигают его.

Кипячение долгое время было основным способом стерилизации инструментов, но в последнее время применяется редко, так как при этом методе достигается температура лишь в 100°С, что недостаточно для уничтожения спороносных бактерий. Инструменты кипятят в специальных электрических стерилизаторах различной емкости.

Инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном виде) укладывают на сетку и погружают в дистиллированную воду (возможно добавление гидрокарбоната натрия — до 2% раствора). Обычное время стерилизации — 30 минут с момента закипания.

22 Термическая стерилизация (паровой метод) Для достижения температур выше точки кипения воды пользуются автоклавом. Автоклав представляет собой установку для стерилизации паром под давлением. Температура насыщенного пара зависит от давления. Режимы работы автоклава: 132 °C 2 атмосферы(2 кгс/см 2) 20 минут основной режим.

Стерилизуют все изделия (стекло, металл, текстиль, КРОМЕ РЕЗИНОВЫХ). 120 °C 1,1 атмосфера(1,1 кгс/см 2) 45 минут щадящий режим.

(стекло, металл, резиновые изделия, полимерные изделия согласно паспорту, текстиль) 110 °C 0,5 атмосферы(0,5 кгс/см 2) 180 мин особо щадящий режим(нестойкие препараты, питательные среды) Компактный переносной автоклав

23 Термическая стерилизация (воздушный метод) Сухой жар. Стерилизация осуществляется в специальных аппаратах — сухо-жаровых шкафах- стерилизаторах. Стерилизация в сухожаровом шкафу происходит при помощи циркуляции внутри него горячего воздуха.

При стерилизации сухим жаром бактериальные споры переносят более высокие температуры и притом дольше, чем при стерилизации влажным жаром. Поэтому жаростойкую стеклянную посуду, порошки, масла и т. п. стерилизуют в течение 1 часа при температуре 180°С.

Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время является главным, наиболее надежным способом стерилизации хирургических инструментов, стеклянной посуды

24 Термическая стерилизация (гласперленовый метод) Принцип действия гласперленового стерилизатора основан на приведении стерилизуемых хирургических инструментов в контакт с маленькими стеклянными сферами, имеющими температуру 250С.

Стерилизатор предназначен для быстрой стерилизации цельнометаллических, не имеющих полостей, каналов и замковых частей, стоматологических и других медицинских инструментов и приспособлений в среде нагретых до температуры ºС стеклянных шариков при полном погружении в них мелких изделий, а также рабочих частей более крупных изделий.

Стерилизация инструмента производится в течение очень короткого времени не более 20 секунд. Благодаря такому короткому периоду и неразрушающему воздействию стерилизационных (глассперленовых) шариков на инструмент, негативное влияние высокой температуры практически отсутствует.

Всего за 5 секунд стерилизует: щипцы, клещи, скальпель- держатели, зонды, шпатели, долота, зубила, алмазы, файлы, боры, корневые элеваторы, расширители, угловые наконечники, иглодержатели, пинцеты, десневые ножницы и т.д.

25 Термическая стерилизация (инфракрасный метод) Малогабаритный стерилизатор предназначен для стерилизации стоматологических и микрохирургических инструментов из металлов в условиях госпиталей, поликлиник, больниц и других лечебных и косметологических учреждений. Стерилизация осуществляется инфракрасным мощным кратковременным тепловым воздействием.

26 Химическая стерилизация (газовый метод) В мировой практике встречаются 2 основных метода: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный. Газовая стерилизация осуществляется в специальных герметичных камерах. Стерилизующим агентом обычно являются: пары формалина (на дно камеры кладут таблетки формальдегида) или окись этилена.

Инструменты, уложенные на сетку, считаются стерильными через 6-48 часов (в зависимости от компонентов газовой смеси и температуры в камере).

Отличительной чертой метода является его минимальное отрицательное влияние на качество инструментария, в связи с чем способ используют прежде всего для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

27 Химическая стерилизация (газовый метод) При стерилизации пищевых продуктов, лекарственных препаратов и разного рода приборов, а также в лабораторной практике оправдало себя применение окиси этилена, которая убивает и вегетативные клетки, и споры, но действует только в том случае, если подвергаемые стерилизации материалы содержат некоторое количество (5-15%) воды. Окись этилена применяют в виде газовой смеси (с N2 или С02), в которой ее доля составляет от 2 до 50%. Этиленоксидный метод обеспечивает самый щадящий температурный режим стерилизации.

28 Химическая стерилизация (плазменный метод) Плазменный метод позволяет создать биоцидную среду на основе водного раствора пероксида водорода, а также низкотемпературной плазмы (ионизированный газ, образующийся при низком давлении). Это самый современный метод стерилизации, известный на сегодняшний день.

Он позволяет стерилизовать любые медицинские изделия, от полых инструментов до кабелей, электроприборов,к которым в ряде случаев вообще не удается применить ни один из известных методов стерилизации.

При этом методе после впрыскивания раствора перекиси водорода в стерилизационную камеру включается источник электромагнитного излучения частотой 13,56 Мгц, под воздействием которого одновременно происходит деление одной части молекул Н2О2 на две группы (ОН-), а другой части — на одну гидропероксильную группу (ООН-) и один атом водорода, сопровождающееся выделением видимого и ультрафиолетового излучения. В результате создается биоцидная среда, состоящая из молекул перекиси водорода, свободных радикалов и ультрафиолетового излучения.

29 Плазма образуется под воздействием сильного электромагнитного излучения в атмосфере паров перекиси водорода. При отключении электромагнитного поля свободные радикалы преобразуются в молекулы воды и кислорода, не оставляя никаких токсичных отходов.

Минимальное время обработки в плазменном стерилизаторе – от 35 минут, рабочая температура – 36-60°С. Одно из основных преимуществ этого метода – отсутствие токсичных отходов, образуются только кислород и водный пар. Плазменная стерилизация уничтожает все формы и виды микроорганизмов.

Плазменные стерилизаторы – перспективное оборудование, но для большинства российских медицинских учреждений слишком дорогостоящее

30 Химическая стерилизация (растворами антисептиков) Стерилизация растворами химических антисептиков, также как лучевая и газовая стерилизация, относится к холодным способам стерилизации и не приводит к затуплению инструментов, в связи с чем применяется для обработки прежде всего режущих хирургических инструментов. Для стерилизации в основном используют 6% перекись водорода. Для холодной стерилизации инструменты полностью погружают в раскрытом (или разобранном) виде в указанный раствор. При замачивании в перекиси водорода инструменты становятся стерильными через 6 часов.

31 Стерилизация ионизирующим излучением Антимикробная обработка может быть осуществлена с помощью ионизирующего излучения (у-лучи), ультрафиолетовых лучей и ультразвука. Наибольшее применение в наше время получила стерилизация у-лучами.

Радиационный метод или лучевую стерилизацию γ-лучами, применяют в специальных установках при промышленной стерилизации однократного применения- полимерных шприцев, систем переливания крови, чашек Петри, пипеток и др.хрупких и термолабильных изделий. Используются изотопы Со 60 и Cs137.

Доза проникающей радиации должна быть весьма значительной — до мк Гр, что требует соблюдения особо строгих мер безопасности. В связи с этим лучевая стерилизация проводится в специальных помещениях и является заводским методом стерилизации (непосредственно в стационарах она не производится).

Стерилизация инструментов и прочих материалов проводится в герметичных упаковках и при целостности последних сохраняется до 5 лет. Герметичная упаковка делает удобными хранение и использование инструментов (необходимо просто вскрыть упаковку).

Метод выгоден для стерилизации несложных одноразовых инструментов (шприцы, шовный материал, катетеры, зонды, системы для переливания крови, перчатки и пр.) и получает все более широкое распространение. Во многом это объясняется тем, что при лучевой стерилизации нисколько не теряются свойства стерилизуемых объектов.

32 Эффективный стерилизатор позволяющий стерилизовать хирургические инструменты и перевязочные материалы сухим теплом и ультрафиолетовыми лучами. Имеет мощное бактерицидное действие.

Рециркулятор предназначен для обеззараживания воздуха помещений в присутствии и отсутствии людей в процессе принудительной циркуляции воздушного потока через корпус, внутри которого размещены две бактерицидные лампы низкого давления.

Бактерицидная камера для хранения стерильных медицинских изделий

33 Меры предосторожности при работе с дезинфектантами К работе с дезинфектантами допускаются лица, достигшие 18-и лет и прошедшие инструктаж; Не допускаются лица с повышенной чувствительностью к применяемым химическим средствам; С дезинфектантами работают только в средствах индивидуальной защиты; Дезинфектанты разводят в специальных комнатах – санитарных комнатах; Дезинфектанты разводят в специальной таре, промаркированной, с плотной крышкой; Дезинфектанты хранят в фирменной упаковке. Пересыпание, переливание недопустимо! Дезинфектанты должны храниться в недоступном для пациента месте.

34 Сбор и хранение медицинских отходов Классификация отходов: А) Неопасные. К ним относятся: пищевые, мебель, инвентарь. Утилизируются в многоразовые емкости или пакеты любого цвета, кроме желтого и красного. Б) Опасные отходы – потенциально инфицированные, загрязненные кровью.

Отходы из операционных, патологоанатомических отделений, с микроорганизмами 3-го и 4-го классов. Собираются в пакеты и емкости желтого цвета.

В) Чрезвычайно опасные отходы – отходы, контактирующие с больными с особо опасными инфекциями; отходы из лабораторий, работающих с микробами 1 – 4-х классов; отходы микологических и физиатрических больниц; отходы пациентов с анаэробными инфекциями. Утилизируются в пакеты и одноразовые емкости красного цвета.

35 Г) Отходы, близкие к промышленным – просроченные лекарства, дезинфицирующие средства; цитостатики, ртутьсодержащие предметы. Утилизируются в пакеты любого цета, кроме желтого и красного.

Д) Радиоактивные отходы – все виды отходов, содержащие радиоактивные компоненты. Утилизируются в специальные контейнеры.

Не разрешается пересыпать отходы из одной тары в другую, ставить пакеты к нагревательным приборам, вручную разрезать и разрушать.

36 Спасибо за внимание!

Ссылка на основную публикацию